Venta, Reparación y Desarrollo de Microscopios y Aparatos Ópticos

RESOLUCIONES CÁMARA DIGITAL PARA MICROSCOPIOS

Es un gran clásico que los clientes me pregunten por cámaras digitales de «cuantos más Megapíxeles mejor» Ahora bién siempre respondo lo mismo cuando me hacen esta pregunta y mi respuesta es:

El poder separador ( A.K.A. resolución) de un microscopio NO la da la cámara sino el Objetivo del microscopio

Ahora bién en el mercado existen cámaras de microscopio desde 1 hasta 32 Megapixeles , siendo habituales los 5 y 10 Megapíxeles, pero si el poder separador/resolución NO la da la cámara….

¿Cuantos píxeles son los necesarios para trabajar con microscopia?

Bueno aquí os argumentaré el motivo de mi respuesta siendo lo más “objetivo” posible.

Primer punto – El poder Separador (A.K.A. Resolución ) de un microscopio

Para determinar CUANTOS píxeles necesitamos antés debemos conocer el poder separador de nuestros microscopios.

Este parámetro viene determinado principalmente por la Apertura Numérica de nuestros objetivos y esta definido por la siguiente formula simplificada :

Form 1 Poder Separador [1]

Donde:

Tabla Poder Separador en µm

Segundo punto – Teorema de Nyquist

Ahora tenemos la resolución de nuestros objetivos, pero ¿ como se traduce eso en píxeles?

Bueno para eso tenemos el Teorema de Nyquist [2] que nos determinará el tamaño de píxel IDEAL para cada uno de nuestros objetivos. No voy a profundizar en él, para más info consultar Wikipedia 😉 .

Una formula para calcular nuestro tamaño de píxel IDEAL en microscopia es:

Form 2 Pixel Ideal [3]

Donde:

Ahora añadimos una columna a nuestra tabla de Poder Separador con la columna Píxel Ideal en µm:

Tabla Dimensiones Pixel Ideal en µm [3]

Tercer punto – Tamaño Sensor Cámara

Ahora sabemos que dimensiones deben tener nuestros píxeles para resolver con máximo detalle las imágenes de nuestros microscopios… pero ( siempre hay perossss ) ¿ como traducimos tamaño de 1 píxel a las resoluciones que manejamos con nuestras cámaras?

La forma más sencilla es:

Form 3 Dimensión Pixel Ideal

Donde consideramos que los píxeles son CUADRADOS

Para un sensor teórico con de 1” de diagonal y un formato de 4/3 obtenemos:

Tabla MegaPíxeles Máximos según aumentos

Por encima del valor MegaPíxeles obtenido estaremos sobremuestreando la imagen y NO OBTENDREMOS MÁS INFORMACIÓN sino simplemente manchas más grandes con más píxeles pero no más “resueltas”.

Por debajo del valor si que PERDEMOS INFORMACIÓN y no es recomendable en absoluto ( si lo podemos evitar claro ).

Un detalle que debemos considerar es que aquí nuestro sensor no tiene ningún elemento óptico que pueda modificar las dimensiones del sensor.

En caso que nuestro microscopio disponga de un adaptador 0,63x o 0,5x para la cámara debemos calcular el tamaño del sensor con la siguiente formula:

Form 4 Dimensión/Campo cámara

Ejemplo de Cámara 1/3” con un adaptador 0,5x:

Comparemos los resultados de los MegaPíxeles máximos con y sin adaptador:

Tabla MegaPíxeles Máximos Cámara 1/3” con adaptador 1x

Tabla MegaPíxeles Máximos Cámara 1/3” con adaptador 0,5x

Aquí vemos la doble utilidad de los adaptadores ópticos para cámaras en los microscopios ya que además de aumentar el “campo” de nuestra imagen nos permiten también obtener imágenes a mayor “Megapíxeles” ¡¡a costa de perder aumento claro!!

Nota:

Esta dimensión de píxel Ideal y todas la tablas hasta aquí presentadas , corresponden a un sensor MONOCROMO.

Los sensores RGB, que habitualmente disponen de un filtro de color con patrón Bayer, el píxel útil NO corresponde al tamaño de Píxel que suministra el fabricante por que no se considera que debemos aplicar una DeMosaicing [4]( interpolación de color ) para obtener un píxel con el color RGB correcto alterando el tamaño del píxel efectivo según el método/algoritmo de DeMosaicing que apliquemos con factores habituales entre 1.25x y 2x según el método usado.

Espero que os sea de utilidad, agradeceré cualquier comentario o corrección que podáis hacer.

Atentamente,

F.Xavier Gómez

Referencias

[1] https://en.wikipedia.org/wiki/Optical_resolution

[2] https://es.wikipedia.org/wiki/Teorema_de_muestreo_de_Nyquist-Shannon

[3] http://www.microscopyu.com/tutorials/java/digitalimaging/pixelcalculator/

[4] https://en.wikipedia.org/wiki/Demosaicing

Todo el contenido pertenece a F.Xavier Gómez se encuentra bajo una Licencia Creative Commons Atribución 3.0 Unported.
Permisos que vayan más allá de lo cubierto por esta licencia pueden encontrarse en http://acolomamicroscopis.com/portal/?page_id=14.

Técnicas de iluminación Microscopio óptico

En la microscopia óptica existen distintas técnicas de iluminación desde el Campo Claro hasta las más complejas técnicas como el Contraste Interferencial Nomarski.

A modo de ejemplo aquí os presento un pequeño vídeo con 3 de estas técnicas, Campo Claro, Contraste de fases y Campo Oscuro tomadas con muestras vivas

Aquí teneis el vídeo:


Para más información podéis contactar conmigo. Saludos,

F.Xavier Gómez
fxgomez@acolomamicroscopis.com

Correción de fondos con ImageJ y Plugin Calculator_Plus

Todos los microscopios, por buenos que sean presentan pequeñas deficiencias en la iluminación de las muestras, esto se traduce que aún realizando el centraje del condensador correctamente, podemos tener diferencia de iluminación entre el centro de la imagen y los bordes de esta.

fonsIncorrecte

En el ImageJ existen multitud de plugins para corregir estas diferencias de iluminación. Aquí os explicaré como hacerlo con el Plugin Calculator_Plus  ( http://rsbweb.nih.gov/ij/plugins/calculator-plus.html ).

Doy por supuesto que ya tenéis instalado el ImageJ ( http://rsbweb.nih.gov/ij/download.html ) y que habéis copiado el Plugin Calculator_Plus.class en la carpeta Plugins.

Para realizar las correcciónes de fondo aplicaremos la formula citada en la web del Calculator_Plus:

Imagen Corregida = (Imagen/Fondo)*255

El resultado es:

Fondo Corregido

Como podreis observar se ha corregido no sólo el fondo , sino también el balance de blancos. Ahora bién el “precio” que debemos pagar es una reducción del rango dinámico de la cámara. Para que el resultado sea el correcto la imagen del fondo DEBE tener la misma exposición y configuración que la imagen a corregir, esto se consigue simplemente quitando la muestra del microscopio ;-).

Aquí va un vídeo de todo el proceso en el que podréis ver que también funciona con imágenes de fluorescencia:

Software LeichtDeco Deconvolución OpenSource

Después de haber publicado varios tutoriales ( podéis encontrarlos en el apartado Tutoriales de la izquierda ) sobre la Deconvolución con ImageJ , he podido ver ¡ que mucha gente se los ha descargado ! pero al comentar su uso con los usuarios más cercanos a mi ( en Barcelona ) me he dado cuenta que el problema de usarlos o no esta directamente relacionado con el uso previo del ImageJ (http://rsb.info.nih.gov/ij/) , provocando que usuarios que no lo conocen o no saben como usar un plugin o instalar una Macro , puedan usarlo correctamente.
Por este motivo me he decido a compilar en un unico JAR una versión del ImageJ con los plugins de Parallel Spectral Deconvolution de  Piotr Wendykier, con una Interface de usuario SUPER BASICA con las mínimas opciones para que deconvolucionar sea MUY FACIL. El programa incluye 4 PSF generados según mis tutoriales que podéis sustituir ( si quereis ) por los vuestros facilmente sobreescribiendo los archivos TIF que están dentro de a carpeta “PSF”.

Podeis descargarlo en el siguiente enlace LEICHTDECO.ZIP

Este software esta contiene partes( por no decir casi TODO 😉 ) de código de ImageJ y de Piotr Wendykier bajo licencia Creative Commons Atribución No Comercial Compartir Igual 3.0 Unported.
12Noviembre-> Añadido que al selecionar la foto/imagen, la previsualice en la ventana antés de Procesarla/Deconvolucionarla.
¡Ultima actualización del 14 Noviembre 2012!

  • Añadido archivo BAT para asignar más RAM al programa para poder deconvolucionar Stacks de Imagenes sin desbordar la memoria del ordenador
  • Añadido Manual de Usuario en PDF
  • Añadida Aplicación para usar el software en entornos MAC OS X

Para cualquier duda o consulta podéis contactar conmigo en info@acolomamicroscopis.com

Saludos,

F.Xavier Gómez

A.COLOMA en la Exposición MICROVIDA del CosmoCaixa

Desde el pasado mes de Marzo, hay instalados 4 equipos ópticos diseñados y realizados íntegramente (óptica, hardware y software ) por A.COLOMA Microscopios ,en el apartado Micrarium de la exposición MICROVIDA que se encuentra en el museo COSMOCAIXA de Barcelona.

Los equipos constan de platinas motorizadas de 3 ejes XYZ + cambio de objetivo motorizado, con una cámara digital FireWire CMOS de 3 Megapixels trabajando a FullHD 1920×1080 pixels a 15 fps.

La electronica de control de las platinas esta diseñada por nosotros y esta basada en ARDUINO (www.arduino.cc ) y el software de gestión de las imagenes y el hardware esta desarrollado en JAVA.

Allí podreís encontrar dos equipos invertidos de Campo Claro, un equipo invertido de Campo Oscuro, un equipo de bajos aumentos.

Equipo Campo Claro Parasitos

Equipos Campo Claro y Campo Oscuro

Equipo Bajos aumentos luz reflejada

Estas imágenes pertenecen al vídeo emitido por el programa de RTVE La aventura del saber del pasado 28 de mayo de 2012, podéis ver la versión integra del reportaje en el link ver vídeo. ACOLOMA se ha encargado de la producción de los sistemas ópticos , electrónicos y el software de control de estos, el diseño de la exposición (mesas , diseño gráfico etc etc ) está realizado por Expografic.

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